红颜草莓组培快繁体系优化.pdf

姚思扬 ，赵春莉 ，刘子平 ，等 ．红颜草莓组培快繁体系优化 ［Ｊ］．福建农业学报 ，２０１８，３３（９）９５０－９５６．ＹＡＯ Ｓ Ｙ，ＺＨＡＯ Ｃ Ｌ，ＬＩＵ Ｚ Ｐ，ｅｔ ａｌ．Ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ Ｒａｐｉｄ Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ Ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ［Ｊ］．Ｆｕｊｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２０１８，３３（９）９５０－９５６．红颜草莓组培快繁体系优化姚思扬 ，赵春莉＊，刘子平 ，刘翰升（吉林农业大学 ，吉林长春１３０１１８）收稿日期 ２０１８－０８－１１初稿 ；２０１８－０９－１４修改稿作者简介 姚思扬 （１９９４－），女 ，硕士研究生 ，主要从事观赏植物资源引种驯化及繁殖技术研究 （Ｅ－ｍａｉｌ１５７５６０３１１９＠ｑｑ．ｃｏｍ）＊通讯作者 赵春莉 （１９７３－），女 ，博士 ，副教授 ，主要从事观赏植物资源引种驯化及繁殖技术研究 （Ｅ－ｍａｉｌｚｃｌ８３６８＠１６３．ｃｏｍ）基金项目 吉林省重点科技攻关项目 （２０１４０２０４０２６ＮＹ）摘要 为进一步优化红颜草莓组培快繁体系 ，以红颜草莓匍匐茎尖为外植体 ，筛选最佳灭菌时间 ，并通过正交试验设计 ，研究培养基及植物生长调节剂对不定芽诱导 、增殖 、生根的影响 。结果显示 最佳灭菌处理为７５％酒精消毒 ３０ｓ，０．１％ＨｇＣｌ２ 消毒 ７ｍｉｎ，成活率可达９０％。对芽诱导的影响作用为基本培养基＞６－ＢＡ＞ＩＢＡ＞ＮＡＡ，筛选出最佳不定芽诱导培养基为ＭＳ＋６－ＢＡ２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．３ｍｇ·Ｌ－１，诱导率 ９２％。增殖阶段 ３种植物生长调节剂对试管苗的影响力为 ６－ＢＡ＞ＧＡ３＞ＩＢＡ，最佳增殖培养基为ＭＳ＋６－ＢＡ０．５０ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．０８ｍｇ·Ｌ－１＋ＧＡ３０．１０ｍｇ·Ｌ－１，增殖系数１３．９７。生根培养阶段 ，对生根指数的影响力为基本培养基＞ＩＢＡ＞蔗糖 ，最佳生根培养基为 １／２ＭＳ＋蔗糖 ３０ｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．４ｇ·Ｌ－１，生根指数为３５．４０。最佳移栽基质为草炭土∶珍珠岩 ＝１∶１，成活率为９３．３３％。本试验采用的植物生长调节剂种类及浓度进一步提高了红颜草莓组培诱导率和增殖率 ，获得了良好的生根指数和移栽成活率 ，进一步优化了红颜草莓的快繁体系 。关键词 草莓 ；茎尖 ；增殖 ；玻璃化 ；生根指数中图分类号 Ｓ６６８．４文献标识码 Ａ 文章编号 １００８－０３８４（２０１８）０９－９５０－０７Ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ Ｒａｐｉｄ Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ ＳｔｒａｗｂｅｒｒｙＹＡＯ Ｓｉ－ｙａｎｇ，ＺＨＡＯ Ｃｈｕｎ－ｌｉ＊，ＬＩＵ Ｚｉ－ｐｉｎｇ，ＬＩＵ Ｈａｎ－ｓｈｅｎｇ（Ｊｉｌｉｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈａｎｇｃｈｕｎ，Ｊｉｌｉｎ １３０１１８，Ｃｈｉｎａ）ＡｂｓｔｒａｃｔＴｏ ｏｐｔｉｍｉｚｅ ｔｈｅ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ ｒａｐｉｄ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ，ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ ａｎｄｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ ｏｎ ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ，ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｒｏｏｔｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ ｂｕｄｓ ｗｅｒｅ ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ ｓｔｅｍ ｔｉｐｓ ｗｉｔｈ ７５％ａｌｃｏｈｏｌ ｆｏｒ ３０ｓａｎｄ ０．１％ ＨｇＣｌ２ｆｏｒ ７ｍｉｎ ｓａｔｉｓｆａｃｔｏｒｉｌｙ ｒｅｎｄｅｒｅｄ ａ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｒａｔｅ ｏｆ ｔｈｅ ｔｉｓｓｕｅ ｕｐ ｔｏ ９０％．Ｔｈｅ ｂｕｄ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｗａｓ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｆｏｌｏｗｉｎｇｆａｃｔｏｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｏｒｄｅｒ ｏｆ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ＞６－ＢＡ＞ＩＢＡ＞ＮＡＡ．Ｔｈｅ ｂｅｓｔ ｍｅｄｉｕｍ ｆｏｒ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ ９２％ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ ＭＳ＋６－ＢＡ ２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ ０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．３ｍｇ·Ｌ－１．Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ３ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ｓｔａｇｅ ｒａｎｋｅｄ ６－ＢＡ＞ＧＡ３＞ＩＢＡ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｏｐｔｉｍａｌ ｍｅｄｉｕｍ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ＭＳ＋６－ＢＡ ０．５０ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．０８ｍｇ·Ｌ－１＋ＧＡ３０．１０ｍｇ·Ｌ－１ ｒｅｓｕｌｔｉｎｇ ｉｎ ａ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｏｆ １３．９７．Ｆｏｒ ｔｈｅｒｏｏｔｉｎｇ，ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｗｅｒｅ ｆｏｕｎｄ ｔｏ ｂｅ ｉｎ ｔｈｅ ｏｒｄｅｒ ｏｆ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ＞ＩＢＡ＞ｓｕｃｒｏｓｅ，ａｎｄ ｔｈｅ ｏｐｔｉｍａｌ ｍｅｄｉｕｍ ｔｏ ｂｅ １／２ＭＳ＋ｓｕｃｒｏｓｅ ３０ｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．４ｇ·Ｌ－１ ｔｏ ｙｉｅｌｄ ａ ｒｏｏｔｉｎｇ ｉｎｄｅｘ ｏｆ ３５．４０．Ｔｈｅ ｂｅｓｔ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ ｗａｓ ｐｅａｔ∶ｐｅｒｌｉｔｅ ａｔ１∶１ｒａｔｉｏ ｔｈａｔ ｐｒｏｖｉｄｅｄ ａ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｒａｔｅ ｏｆ ９３．３３％．Ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ ａｎｄ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ，ａｎｄ ｏｂｔａｉｎｅｄ ａ ｇｏｏｄ ｒｏｏｔｉｎｇ ｉｎｄｅｘ ａｎｄｓｅｅｄｌｉｎｇ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｒａｔｅ，ａｎｄ ｆｕｒｔｈｅｒ ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ ｔｈｅ ｒａｐｉｄ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｏｆ Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ．ＫｅｙｗｏｒｄｓＦｒａｇａｒｉａａｎａｎａｓｓａ；ｓｔｅｍ ｔｉｐ；ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ；ｖｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ；ｒｏｏｔｉｎｇ ｉｎｄｅｘ草莓 （Ｆｒａｇａｒｉａａｎａｎａｓｓａ Ｄｕｃｈ．）是蔷薇科草莓属多年生草本植物 ，易栽培管理 ，适应性强 。红颜草莓 （Ｆｒａｇａｒｉａａｎａｎａｓｓａ Ｄｕｃｈ．Ｂｅｎｉｈｏｐｐｅ）由日本静冈县农业试验场杂交育成 ，其父本为幸香 ，母福建农业学报 ３３（９）９５０～９５６，２０１８ ｈｔｔｐ／／ｗｗｗ．ｆｊｎｙｘｂ．ｃｎＦｕｊｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｄｏｉ１０．１９３０３／ｊ．ｉｓｓｎ．１００８－０３８４．２０１８．０９．０１１本为章姬［１］。红颜长势强 ，株形挺立 ，休眠期短 ；果实个大 ，产量高 ，香甜可口 ，硬度大 ，便于运输储藏 ，是品质优良的草莓品种［２］。近几年在我国各地推广栽培 ，具有广阔的市场前景 。草莓的传统繁殖方式为匍匐茎繁殖和分株繁殖 ，繁殖速度慢 ，长期的营养繁殖也会导致植株体内各种病毒积累 、植株矮化 、果实畸形 、病虫害加剧 ，从而使品种退化 ，产量降低［３］。组织培养效率高 ，增殖系数大 ，不受季节 、天气限制 ，可保留植株的优良性状 ，减少病毒感染 ，是草莓大量生产繁殖的有效途径［４］。近几年 ，以草莓 叶 片［５－６］、茎尖［７－９］、花药［１０］为外植体进行组织培养的研究已有报道 ，但红颜草莓的快繁体系还不够完善 ，如初代培养阶段 ，基础培养基的筛选鲜有研究 ；继代培养阶段 ，选择的植物生长调节剂及浓度不够理想 ，增殖系数不高 ，难以突破１０倍增殖［８］；生根培养阶段 ，对 生 根 率 、生 根 长 度 、生 根 条 数 的 研究［１１－１２］均已有研究 ，但缺乏将各参数进行拟合 、直观全面表达生根状态的研究 。并且大多数研究在培养基的筛选上采用传统方法逐一尝试 ，费时费力 ，筛选不够全面 。因此 ，红颜草莓快繁体系还有待完善 。本试验以红颜草莓匍匐茎尖为外植体 ，采用正交试验设计 ，研究不同基本培养基 、植物生长调节剂对红颜草莓组培体系的影响 ，以提高红颜草莓组培的增殖率及成活率 ，完善红颜草莓组培快繁体系 ，为组培生产育苗提供理论参考 。１ 材料与方法１．１ 试验材料试验材料为栽种于吉林农业大学温室的当年生红颜草莓幼嫩匍匐茎尖 。外植体于５月中旬采摘 ，用低温保温箱带回组培实验室 。１．２ 试验方法１．２．１ 外植体灭菌处理将采摘回的茎尖用洗洁精洗净表层泥土 ，用流水冲洗１ｈ。放入超净工作台的滤纸上吸干表面水分 ，放入灭菌后的烧杯中 ，加入７５％酒精分别处理２０、３０ｓ，用无菌水冲洗５次 。再用０．１％升汞分别消毒５、７、９ｍｉｎ，期间不断震荡 ，用无菌水冲洗５次 。用灭菌后的镊子与刀片 ，剥去茎尖外苞叶 ，留取内部茎尖备用 。每种处理２０个外植体 。１５ｄ后 ，观察成活率 。１．２．２ 初代诱导培养采用４因素３水平Ｌ９（３４）进行试验 ，探究基础培养基 （ＭＳ、ＷＰＭ、Ｂ５）、不同植物生长调节剂及其质量浓度 （６－ＢＡ ０．５、１．０、２．０ｍｇ·Ｌ－１；ＩＢＡ ０．１、０．２、０．３ｍｇ·Ｌ－１；ＮＡＡ０．１、０．２、０．３ｍｇ·Ｌ－１）对草莓不定芽诱导的影响 。将处理好的茎尖接种到培养基内 ，每个处理接种２５个外植体 ，重复３次 。培养３０ｄ后 ，观察外植体诱导情况 ，统计数据 。诱导率 ／％＝（萌发出芽的茎尖 ／接种的茎尖数 ）１００％。１．２．３ 继代增殖培养以ＭＳ为基础培养基 ，采用３因素３水平Ｌ９（３４）进行试验 。设置以下因素水平 ６－ＢＡ，０．２０、０．５０、０．８０ｍｇ·Ｌ－１；ＩＢＡ，０．０２、０．０５、０．０８ｍｇ·Ｌ－１；ＧＡ３，０．０５、０．１０、０．２０ｍｇ·Ｌ－１。将诱导的不定芽接种到培养基内 ，每个处理１０个芽 ，重复３次 ，３０ｄ后 ，观察统计数据 。增殖系数＝３０ｄ后不定芽总数 ／接种的不定芽数 。１．２．４ 生根培养采用３因素３水平Ｌ９（３４）进行试验 。探究培养基内营养物质 、蔗糖 、生长调节剂对草莓生根的影响 。设置以下因素水平 基本培养基 ，１／４ＭＳ、１／２ＭＳ、ＭＳ；蔗 糖 质 量 浓 度 ，２０ｇ·Ｌ－１、３０ｇ·Ｌ－１、４０ｇ·Ｌ－１；ＩＢＡ质量浓度 ，０．１ｍｇ·Ｌ－１、０．２ｍｇ·Ｌ－１、０．４ｍｇ·Ｌ－１。挑选长势一致 ，生长健壮的试管苗 ，转接到培养基内 ，每个处理１０个芽 ，３次重复 ，３０ｄ后 ，观察记录生根情况 。生根率＝３０ｄ后生根苗总数 ／接种苗总数１００％，平均生根数＝生根总条数 ／生根苗总数 ，平均根长＝生根总长度 ／生根苗总数 ，生根指数＝生根率平均生根数平均根长［１３］。１．２．５ 炼苗与移栽将长势健壮 、长出３条以上不定根的生根苗放到温室中炼苗 ，将瓶口敞开３ｄ，让试管苗适应温室环境 。将试管苗取出 ，洗净根部培养基 ，栽入营养钵中 ，喷洒０．１％多菌灵溶液灭菌消毒 。保持温室内湿度一定 ，通风良好 ，温度控制在２５℃。营养钵内设置４种基质 （１）营养土 ；（２）营养土∶珍珠岩＝１∶１（ｖ／ｖ）；（３）草炭土 ；（４）草炭土∶珍珠岩＝１∶１（ｖ／ｖ）。每个处理１０盆 ，重复３次 ，３０ｄ后统计成活率 。成活率＝３０ｄ后成活苗数 ／栽培苗数１００％。１．２．６ 培养条件试验中培养基若无特殊说明 ，均加蔗糖３０ｇ·Ｌ－１，琼脂粉７ｇ·Ｌ－１，ｐＨ调至５．８～６．０。将培养瓶放置在培养室内 ，每天光照时间为１４ｈ，温 度 设 置 为 （２５±２）℃，光 照 强 度２ ０００ｌｘ。１．３ 数据处理试验 采 用 软 件ＳＰＳＳ ２０．０进行数据统计与分析 。１５９第９期 姚思扬等 红颜草莓组培快繁体系优化２ 结果与分析２．１ 灭菌处理从表１可知 ，在消毒过程中 ，用７５％酒精处理３０ｓ的红颜草莓成活率高于处理２０ｓ。酒精消毒时间不变的条件下 ，使用０．１％ＨｇＣｌ２的最佳消毒时间为７ｍｉｎ。消毒时间过短 ，植株滋生菌类 ，污染率高 。消毒时间过长 ，会破坏茎尖的生长点及内部组织 ，使外植体死亡 。试验结果表明最佳的消毒 处 理 为 用７５％酒 精 消 毒３０ｓ后 ，用０．１％ＨｇＣｌ２消毒７ｍｉｎ，成活率为９０％。表 １灭菌处理结果Ｔａｂｌｅ １ Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ处理７５％酒精灭菌时间 ／ｓ０．１％ＨｇＣｌ２灭菌时间 ／ｍｉｎ成活率／％１ ２０ ５ ４５２ ２０ ７ ７５３ ２０ ９ ４０４ ３０ ５ ５５５ ３０ ７ ９０６ ３０ ９ ５０２．２ 初代诱导接种１０ｄ后 ，在生长点处有绿色芽点生成 ，１５～２０ｄ后芽点萌发出嫩芽 。由表２极差Ｒ值可知 ，不同因素对不定芽诱导率的影响 基本培养基＞６－ＢＡ＞ＩＢＡ＞ＮＡＡ。基本培养基在芽诱导中起主要作用 ，对诱导率有极显著影响 （表３）。３种培养基的主要区别在于盐离子的种类和浓度不同 ，结果表明ＭＳ培养基更适于草莓茎尖的诱导分化 ，ＷＰＭ诱导效果一般 ，Ｂ５培养基的诱导效果较差 。６－ＢＡ对诱导率的影响显著 ，同一种基础培养基中 ，诱导率随６－ＢＡ质量浓度的增加而增加 。ＮＡＡ和ＩＢＡ对诱导率影响较小 ，但也对芽的诱导起一定的促进作用 。结果表明ＭＳ培养基处理的诱导率显著高于ＷＰＭ和Ｂ５处理 ，处理２（ＭＳ＋６－ＢＡ １．０ｍｇ·Ｌ－１＋ ＮＡＡ ０．２ ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．２ｍｇ·Ｌ－１）和处理３（ＭＳ＋６－ＢＡ ２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ ０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．３ｍｇ·Ｌ－１）诱导率没有显著差异 ，处理３是诱导不定芽的最佳培养基 ，诱导率可达９２％。表 ２初代培养正交试验结果Ｔａｂｌｅ ２ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｎ ｐｒｉｍａｒｙｃｕｌｔｕｒｅ处理基础培养基６－ＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）ＮＡＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）ＩＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）诱导率／％１ １（ＭＳ）１（０．５）１（０．１）１（０．１）８１．３３±４．６２ｂ２ １ ２（１．０）２（０．２）２（０．２）９０．６７±２．３１ａ３ １ ３（２．０）３（０．３）３（０．３）９２．００±４．００ａ４ ２（ＷＰＭ）１ ２ ３ ６１．３３±４．６２ｃ５ ２ ２ ３ １ ６２．６７±４．６２ｃ６ ２ ３ １ ２ ６８．００±４．００ｃ７ ３（Ｂ５）１ ３ ２ ４４．００±４．００ｄ８ ３ ２ １ ３ ４６．６７±４．６２ｄ９ ３ ３ ２ １ ５０．６７±２．３１ｄＫ１ ８８．００ ６２．２２ ６５．３３ ６４．８９Ｋ２ ６４．００ ６６．６７ ６７．５６ ６７．５６Ｋ３ ４７．１１ ７０．２２ ６６．２２ ６６．６７Ｒ ４０．８９ ８．００ ２．２３ ２．６７注 不同小写字母表示在 ０．０５水平差异显著 。表 ４、６、８同 。表 ３草莓茎尖不定芽诱导的方差分析Ｔａｂｌｅ ３ Ｖａｒｉａｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｎ ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ ｂｕｄ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆｓｔｒａｗｂｅｒｒｙｓｔｅｍ ｔｉｐｓ因素 ＩＩＩ型平方和 自由度 均方 ＦＳｉｇ．基本培养基 ７５９９．４０７２ ３７９９．７０４ ２３７．４８１ ０．０００６－ＢＡ ２８９．１８５ ２ １４４．５９３ ９．０３７ ０．００２ＩＢＡ ３３．１８５ ２ １６．５９３ １．０３７ ０．３７５ＮＡＡ ２２．５１９ ２ １１．２５９ ０．７０４ ０．５０８误差 ２８８．０００１８ １６．０００２．３ 增殖培养由表４、５结果可知 ，不同植物生长调节剂对红颜草莓不定芽增殖的影响 ６－ＢＡ＞ＧＡ３＞ＩＢＡ。６－ＢＡ对增殖系数有极显著影响 ，在增殖过程中起主要作用 ，增殖系数随６－ＢＡ质量浓度增加而增加 。ＧＡ３对增殖效果也有显著影响 ，可促进不定芽增殖和生长 ；ＩＢＡ的影响不显著 ，但也有一定的促进作用 。接种２０ｄ后 ，不定芽出现增殖现象 ，逐 渐 形 成 丛 生 芽 。在６－ＢＡ质 量 浓 度 为０．２ｍｇ·Ｌ－１时 ，增殖系数低 ，丛生芽长势弱 （图１）；６－ＢＡ质量浓度为０．５ｍｇ·Ｌ－１时 ，增殖系数高 ，丛生芽生长健壮 （图２）；６－ＢＡ质量浓度为０．８ｍｇ·Ｌ－１时 ，增值系数高 ，但芽长势一般 ，并且出现玻璃化苗 （图３），玻璃化苗叶片呈浸水状 ，失绿严重 ，苗脆弱易断 ，无法正常生长 。由此可知６－ＢＡ可促进不定芽的增殖 ，但浓度不宜过高 。综合分析结果 表 明 ，增 殖 培 养 基 处 理６（ＭＳ＋６－ＢＡ０．５ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ ０．０８ｍｇ·Ｌ－１＋ ＧＡ３０．１０２５９福建农业学报 第３３卷ｍｇ·Ｌ－１）增殖系数为１３．９７，显著高于其 他 处理 ，与处 理７（ＭＳ＋６－ＢＡ ０．８ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．０２ｍｇ·Ｌ－１＋ＧＡ３０．３０ｍｇ·Ｌ－１）没有显著差异 ，但处理７丛生芽长势一般 ，出现玻璃化苗 。表 ４继代增殖正交试验结果Ｔａｂｌｅ ４ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｔｅｓｔ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅ ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ处理６－ＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）ＩＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）ＧＡ３／（ｍｇ·Ｌ－１）增殖系数 长势１ １（０．２）１（０．０２）１（０．０５） （５．９０±０．２６）ｆ －２ １ ２（０．０５）２（０．１０） （６．０７±０．１５）ｆ －３ １ ３（０．０８）３（０．２０） （６．３３±０．３２）ｆ ＋４ ２（０．５）１ ２（９．２３±０．４７）ｅ ＋＋５ ２ ２ ３（１１．３３±１．７２）ｃｄ ＋＋６ ２ ３ １（１３．９７±０．７４）ａ ＋＋７ ３（０．８）１ ３（１３．３７±０．３８）ａｂ ＋＋△８ ３ ２ １（１２．４０±０．８７）ｂｃ ＋△９ ３ ３ ２（１０．６７±０．４７）ｄ －△Ｋ１ ６．１０ ９．５０ １０．７６Ｋ２ １１．５１ ９．９３ ８．６６Ｋ３ １２．１５ １０．３２ １０．３４Ｒ ６．０５ ０．３９ ２．１０注 －为芽长势弱 ，＋为芽长势一般 ，＋＋为芽长势健壮 ，△为苗有玻璃化 。表 ５草莓丛生芽增殖的方差分析Ｔａｂｌｅ ５ Ｖａｒｉａｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｎ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙｂｕｄ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ因素 ＩＩＩ型平方和 自由度 均方 ＦＳｉｇ．６－ＢＡ １９８．６５０ ２ ９９．３２５ ６６．１４６ ０．０００ＩＢＡ ３．０４５ ２ １．５２３ １．０１４ ０．３８１ＧＡ３ ２２．２９４ ２ １１．１４７ ７．４２３ ０．００４误差 ３０．０３２０ １．５０２图 １增殖差的继代苗 （处理 １）Ｆｉｇ．１ Ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｉｔｈ ｐｏｏｒ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ １）图 ２增殖好的继代苗 （处理 ６）Ｆｉｇ．２ Ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｉｔｈ ｄｅｓｉｒａｂｌｅ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ６）图 ３玻璃化苗Ｆｉｇ．３ Ｖｉｔｒｉｆｉｃａｔｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ２．４ 生根培养生根阶段统计了生根率 、平均生根长度 、平均生根数多项数据 ，并计算生根指数作为综合指标进一步分析 。通过表６极差Ｒ值可知 ，３种因素对生根指数影响 基本培养基＞ＩＢＡ＞蔗糖 。由表７可知 ，培养基与ＩＢＡ对生根效果影响显著 ，蔗糖浓度对生根效果的影响不显著 。培养基３个水平的区别在于大量元素浓度不同 ，其中Ｋ２的值最大 ，Ｋ３次之 ，Ｋ１最小 ，可知１／２ＭＳ更适于草莓生根 。在ＩＢＡ的３个水平中 ，Ｋ３值最大 ，可知ＩＢＡ质量浓度为０．４０ｍｇ·Ｌ－１时生根效果最佳 ，在基本培养基一定的情况下 ，生根指数随ＩＢＡ质量浓度的升高而升高 。最终 ，可筛选出最佳生根培养基为处理５１／２ＭＳ＋蔗糖３０ｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．４０ｍｇ·Ｌ－１，生根率为１００％，平均生根数为６．６７，平均根长为５．５７，生根指数为３５．４０（图４、５）。３５９第９期 姚思扬等 红颜草莓组培快繁体系优化表 ６生根阶段正交试验结果Ｔａｂｌｅ ６ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｎ ｒｏｏｔｉｎｇ处理 基本培养基蔗糖 ／（ｇ·Ｌ－１）ＩＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）生根率／％平均生根数／根平均根长／ｃｍ生根指数１ １（１／４ＭＳ）１（２０）１（０．１０）７３．３３±３．３４ｃ ２．２７±０．１５ｅ ３．３７±０．１５ｄ ６．８１±０．１５ｅ２ １ ２（３０）２（０．２０）７６．６７±３．３４ｃ ３．４７±０．２５ｄ ３．６０±０．１７ｄ ９．５８±１．２６ｄｅ３ １ ３（４０）３（０．４０）７１．１１±１．９２ｃ ３．７０±０．４３ｄ ４．３７±０．１５ｃ １１．５３±２．００ｄ４ ２（１／２ＭＳ）１ ２ ９５．５６±５．０９ａｂ ６．００±０．３０ｂ ４．６７±０．１５ｂｃ ２６．７７±１．９３ｃ５ ２ ２ ３ １００．００±０．００ａ ６．６７±０．１５ａ ５．５７±０．４２ａ ３５．４０±３．１８ａ６ ２ ３ １ ９５．５６±１．９３ａｂ ５．４３±０．１５ｃ ５．９０±０．３６ａ ３２．０５±２．０７ａｂ７ ３（ＭＳ）１ ３ ９６．６７±３．３４ａｂ ６．０７±０．２５ｂ ５．４７±０．３１ａ ３２．０３±１．９１ａｂ８ ３ ２ １ ９２．２３±５．０９ｂ ５．４３±０．２５ｃ ４．９７±０．３１ｂ ２４．８７±１．３１ｃ９ ３ ３ ２ ９３．３３±３．３４ｂ ５．８３±０．３１ｂｃ ５．７３±０．１５ａ ３１．２０±１．７３ｂＫ１ ９．３１ ２１．８７ ２１．２４Ｋ２ ３１．４１ ２３．２８ ２２．５２Ｋ３ ２９．３７ ２４．９３ ２６．３２Ｒ ２２．１０ ３．０６ ５．０８注 Ｒ为生根指数的极差值 。表 ７草莓生根指数的方差分析Ｔａｂｌｅ ７ Ｖａｒｉａｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｎ ｒｏｏｔｉｎｇｉｎｄｅｘ因素 ＩＩＩ型平方和 自由度 均方 ＦＳｉｇ．培养基 ２６８５．４０８２ １３４２．７０４ １９７．４４２ ０．０００蔗糖 ４２．０６７２ ２１．０３４ ３．０９３ ０．０６８ＩＢＡ １２５．４７６ ２ ６２．７３８ ９．２２６ ０．００１误差 １３６．０１０２０ ６．８０１图 ４生根苗Ｆｉｇ．４ Ｒｏｏｔｉｎｇｓｅｅｄｌｉｎｇｓ图 ５生根苗Ｆｉｇ．５ Ｒｏｏｔｉｎｇｓｅｅｄｌｉｎｇｓ２．５ 炼苗与移栽３０ｄ后统计成活情况 （表８），草炭土与营养土的红颜草莓成活率有显著差异 。基质只有营养土时 ，成活率仅５３．３３％，加入珍珠岩后 ，成活率明显提高 。基质只为草炭土时 ，成活率良好 ，加入珍珠岩后 ，成活率可达９３．３３％。说明草炭土更适于草莓试管苗移栽 ，珍珠岩有良好的保水性和透气性 ，与草炭土１∶１配合使用 ，适用于红颜草莓的移栽 （图６）。４５９福建农业学报 第３３卷表 ８不同基质对草莓成活率的影响Ｔａｂｌｅ ８ Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ ｏｎ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｒａｔｅ ｏｆ ｓｔｒａｗｂｅｒｒｙ处理 基质成活率／％１ 营养土 ５３．３３±０．５８ｂ２ 营养土 ∶珍珠岩 ＝１∶１ ８３．３３±１．５３ａ３ 草炭土 ８０．００±１．００ａ４ 草炭土 ∶珍珠岩 ＝１∶１ ９３．３３±０．５８ａ图 ６移栽苗Ｆｉｇ．６ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ３ 讨论关于草莓茎尖的消毒方法 ，有研究［１２］用７５％酒精消毒３０ｓ，０．１％ＨｇＣｌ２消毒８ｍｉｎ，再用１０％ＮａＣｌＯ处理１０ｍｉｎ。还有研究［８］将草莓茎尖放入１％８４消毒液和０．３％Ｈ２Ｏ２预灭菌２０ｍｉｎ，用流水冲洗后 ，再用７５％酒精与０．１％ＨｇＣｌ２，两滴吐温灭菌 。本试验采用７５％酒精消毒３０ｓ，０．１％ＨｇＣｌ２消毒７ｍｉｎ，成活率可达９０％，同样取得了很好的灭菌效果 。在一定程度上节省了试验成本和时间 。在初代培养阶段 ，红颜草莓最佳诱导培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．３ｍｇ·Ｌ－１，诱导率９２％。张黎凤等［４］利用０．５ｍｇ·Ｌ－１６－ＢＡ和０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＮＡＡ对草莓茎尖进行诱导 ，最佳诱导率为８５％；田芳等［１４］采用１．０ｍｇ·Ｌ－１６－ＢＡ和０．２ｍｇ·Ｌ－１ ＮＡＡ对草莓茎尖进行诱导 ，诱导率为５６％，二者诱导率均没有本次试验高 ，其原因可能是本试验采用的６－ＢＡ浓度更高 ，配以适宜浓度的ＩＢＡ和ＮＡＡ，更好地满足红颜草莓诱导培养的需求 。茎尖是顶端分生组织 ，分裂能力极强 ，且生长点病毒较少［１５］，易萌发 ，诱导周期短 ，是组培试验中被广泛应用的外植体 。而草莓叶片［１６］，其生理学特征对组培诱导有较大影响 ，如叶片的发育程度 、长势等因素［１７］，以叶片作为外植体对叶片的成熟度 、长势 、分裂能力要求较高 ，要先诱导愈伤组织 ，才可诱导出不定芽 ，诱导周期较长 。陈英等［１８］对草莓继代培养研究发现 ，在增殖培养基中添加６－ＢＡ与ＩＢＡ，得到的最佳增殖系数为６．６２；翟婷婷等［１９］添加６－ＢＡ与ＮＡＡ于草莓增殖培养 ，最佳增殖系数为５．０。本试验的最佳增殖培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ０．５０ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．０８ｍｇ·Ｌ－１＋ＧＡ３０．１０ｍｇ·Ｌ－１，增殖系数１３．９７，明显高于红颜草莓已有研究报道的增殖率 。植物生长调节剂的种类及浓度对植物分化 、增殖有至关重要的 影 响 。李 会 珍 等［２］采用不同浓度的６－ＢＡ、ＫＴ、ＩＢＡ、ＮＡＡ进行草莓增殖试验 ，６－ＢＡ的增殖效果最显著 。本试验也证实了６－ＢＡ是对增殖影响力最大的植物生长调节剂 。李晓亮等［２０］在试验中发现低质量浓度６－ＢＡ（０．５ｍｇ·Ｌ－１）增殖效果 好 ， 苗 的 长 势 良 好 。 高 浓 度６－ＢＡ（２．０ｍｇ·Ｌ－１）对不定芽的增殖效果不佳 ，会产生愈伤组织 ，并有玻璃化现象 。本次试验同样在６－ＢＡ浓度为０．５ｍｇ·Ｌ－１时增殖系数最高 ，芽长势最佳 ，但６－ＢＡ浓度为０．８ｍｇ·Ｌ－１时 ，就有玻璃化现象产生 ，可能因草莓品种不同 ，植物生长调节剂组合比例不同因而结果不一致 。但都证实６－ＢＡ对增殖有良好效果 ，且浓度过高会产生玻璃化苗 ，不利于植物生长 。本试验中选择的３种植物生长调节剂浓度都比较低 ，其中ＧＡ３在过去的草莓组培试验中并不常用 ，但本研究发现其对草莓增殖具有显著影响 ，３种植物生长调节剂合适配比的增殖效果明显增强 。本试 验 中 ，红 颜 草 莓 最 佳 生 根 培 养 基 为 １／２ＭＳ＋蔗糖３０ｇ·Ｌ－１＋ＩＢＡ０．４ｇ·Ｌ－１，生根指数为３５．４０。在草莓组培的相关研究中 ，生根阶段统计的数据大多为根长 、生根数 、生根率 ，再将各数据分别分析 ，这种分析方法不够直观 。本次试验以生根指数作为综合指标 ，可直观地看出各个处理的生根情况 。郭靖等［２１］研究了１／４ＭＳ、１／２ＭＳ、ＭＳ培养基对草莓的生根效果 ，结果显示３种培养基都有很好的生根效果 ，其中１／２ＭＳ根的长势最佳 ，与本试验研究结果一致 。但郭靖等［２１］研究发现蔗糖浓度对生根影响 力 很 大 ，蔗 糖 浓 度 为２０ｇ·Ｌ－１时 ，生根效果最佳 ，而本试验中蔗糖浓度５５９第９期 姚思扬等 红颜草莓组培快繁体系优化对生根没有显著影响 ，可能是由于添加了ＩＢＡ，具体有待进一步分析 。前人研究［２２－２３］中 ，在草莓生根阶段加入活性炭 ，得到较好的生根效果 。本次试验没有用活性炭 ，也有很好的生根效果 ，最佳生根培养基的生根率可达１００％。活性炭给植物创造了类似土壤的暗环境 ，产生对生长调节剂及其他有机物吸附和释放的作用［２４］。适量的活性炭可促进植物生长生根 ，过量可能会吸附培养基内的营养物质 ，对植物生长不利 。故活性炭在组培的应用上要根据植物品种 、生长环境严格掌控用量 。在炼苗移栽阶段 ，本试验红颜草莓的最佳栽培基质 为 珍 珠 岩∶草 炭 土＝１∶１，成 活 率 为９３．３３％。草莓常用的栽培基质有珍珠岩 、蛭石 、河沙 、珍珠岩 、营养土 、草炭土等 。梁凤龙［２５］用草炭∶蛭石∶珍珠岩＝２∶１∶１为基质 ，试管苗的成活率为９０％。本次试验只用两种栽培基质混合 ，得到了较好的试验结果 ，在一定程度上简化了试验步骤 ，节约了试验成本 。参考文献 ［１］方博云 ，费鸣毅 ，朱小富 ，等．草莓新品种红颊 ［Ｊ］．上海蔬菜 ，２００４（４）２１－２２．［２］李会珍 ，徐东进 ，陈登金 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